II curso de técnicas de biología celular aplicadas al estudio del sistema nervioso " ("II Course of Cell Biology Techniques applied to the study of the Nervous System") 

Tipo
Curso de extensión universitaria.
Estado
Concluido.
Plazas
23
Fecha de inicio
14/06/2017
Fecha de finalización
21/06/2017
Horarios
9:00 -14:30

Duración
35 horas presenciales + 40 horas de trabajo del alumno
Destinatarios
Licenciados, posgraduados o alumnos de grado de 2º, 3º y 4º de Ciencias Biológicas, Biotecnología, Veterinaria y Enfermería.

Reconocimiento de créditos
ECTS:3
Lugar y aulas de impartición
Facultad de Ciencias Biológicas y Ambientales
Laboratorio del Área de Biología Celular
Tasas de matrícula
  • Ordinaria:200 €
  • Alumnos ULE:190 €
  • Alumnos de otras universidades:200 €
  • Desempleados:200 €
Objetivos

A continuación, se detallan los objetivos generales que se pretenden en la realización de este curso:

1) Proporcionar los conocimientos básicos de técnicas de Biología Celular.

2) Capacitar al estudiante para la realización de técnicas básicas de Biología Celular.

3) Dar a conocer estas técnicas a estudiantes de carreras relacionadas con las ciencias de la vida y la salud, que no cuenten con una formación específica en este campo.

Los objetivos específicos son:

a) Explicar los aspectos básicos de funcionamiento de un laboratorio de investigación y buenas prácticas  de laboratorio (BPLs). Se pretende proporcionar formación sobre los riesgos y normas de seguridad en un laboratorio y realización de un cuaderno de laboratorio.

b) Facilitar la comprensión de las bases teóricas generales de las técnicas en Biología Celular.

c) Dar a conocer las directrices básicas de cuidado y utilización de animales con fines científicos y su aplicación en dos modelos experimentales de ictus.

d) Enseñar las técnicas más comunes de fijación, obtención y preparación de muestras biológicas, con especial atención en las muestras de sistema nervioso.

e) Enseñar al estudiante algunos  métodos de preparación de muestras para microscopía de fluorescencia y confocal.

f) Enseñar el proceso de adquisición de imágenes de microscopía y el procesado de las mismas.  



Competencias y resultados de aprendizaje

Los objetivos marcados pretenden que los alumnos adquieran las siguientes competencias:

1) Conocer el funcionamiento de un laboratorio de investigación en Biología Celular, los riesgos y las normas de seguridad básicos.

2) Conocer el objetivo y características del cuaderno de laboratorio y su importancia en el proceso de investigación.

3) Conocer las bases teóricas de las técnicas utilizadas en el curso.

4) Conocer la legislación vigente sobre el cuidado de animales de experimentación y las directrices básicas para el manejo de los mismos.

5) Utilizar en la práctica técnicas de rutina de fijación, obtención y preparación de muestras.

6) Utilizar en la práctica técnicas de histoquímica e inmunocitoquímica.

7) Observar muestras mediante el microscopio confocal y otros microscopios de fluorescencia.

8) Conocer las bases del análisis de imagen.

9) Opcionalmente participar en un minisimposio.



Programa
1) Manipulación de animales, necropsias, preparación de fijadores y métodos de fijación, obtención de muestras. Normas de registro anotado de datos. Buenas prácticas de laboratorio (BPLs). Riesgo y seguridad en el laboratorio. Hojas de datos de seguridad (MSDS). Duración:5 horas.

2) Obtención de secciones mediante microtomo de congelación. Técnicas histoenzimáticas. Tinciones de rutina en biología celular. Modelos experimentales de accidente cerebrovascular. Evaluación de la mortalidad y supervivencia celular. Duración: 10 horas.

3) Inmunocitoquímica. Parte 1. Técnica de secciones libres flotantes. Preparación e incubación con anticuerpos primarios para su detección mediante peroxidasa e inmunofluorescencia: Marcado con el anticuerpo primario. Duración: 6 horas.

4) Inmunocitoquímica. Parte 2. Técnica de secciones libres flotantes. Detección de anticuerpos primarios con anticuerpos secundarios para su detección mediante peroxidasa e inmunofluorescencia. Duración: 6 horas.

5) Observación en microscopía de campo claro, confocal y otros microscopios de fluorescencia. Captura de imágenes. Duración: 5 horas.

6) Análisis mediante “ImageJ”. Cuantificación estereológica y densitométrica. Duración: 3 horas.

7) Análisis de los datos obtenidos y evaluación de los conocimientos. Actividades no presenciales.

8) Presentación de un poster en un minisimposio online. Actividad opcional. Reconocible por la NTU. Duración: 5 horas.

Programme

1) Animal handling, necropsies, sampling, preparing and fixing tissues. Recording data. Good laboratory practice (GLP). Recording observations. Health and safety in the laboratory. Material Safety Data Sheets (MSDS). 5 hours.

2) Obtaining sections with cryostat and freezing microtome. Routine staining in Cell Biology. Experimental models of stroke. Cell mortality measuring. 10 hours

3) Immunocytochemistry. Part 1. Immunocytochemistry of free floating sections. Peroxidase and immunofluorescence methods: Labeling with a primary antibody. 6 hours

4) Immunocytochemistry. Part 2. Immunocytochemistry of free floating sections immunocytochemistry. Peroxidase and immunofluorescence methods: Labeling and detection with a secondary antibody. 6 hours

5) Observation in light, confocal and other fluorescence microscopes. Image capture. 5 hours

6) Analysis images with ImageJ. Stereologic and densitometric quantification. 3 hours.

7) Data analysis and evaluation. No attendant activities.

8) Optional: Presenting a poster in a minisymposium online. 5 hours.


Criterios de evaluación
Se exigirá la asistencia de al menos el 80% de las sesiones presenciales/online.

Los alumnos realizaran pruebas de tipo test en la plataforma Moodle (20-50 preguntas) sobre cada una de las competencias especificadas en los objetivos. Tiene que obtenerse un mínimo de 75% de preguntas correctas en cada test para superar el curso. Las presentaciones del minisimposio incluirán aspectos teóricos y prácticos de las prácticas, serán evaluados por profesorado de la Universidad de León y Nottigham Trent University y sus certificados serán reconocidos por ambas universidades. Los alumnos que no participen in the minisymposium solo recibirán reconocimiento por la Universidad de León.


Online minisymposium presentations will include theoretical and practical aspects of the course and will be "evaluated" by teachers of the Universities of Leon and NTU that will certify the attendence. Students not involved in the minisymposium will only receive the certify of the course. (This part is just for your information, it won't be included in the memory).

80% attendance of the sessions is required.



Director/es
  • Arsenio Fernández López. Catedrático de Biología Celular. Director del Grupo de Neurobiología de la ULE. Universidad de León.
Profesorado/Ponentes
  • Carlos César Pérez García. Profesor . Facultad de Veterinaria. Universidad de León.

  • Christian Thode . Senior Lecturer in Pharmacology.. Nottingham Trent University. UK
Colaborador/es
  • Diego Pérez Rodríguez. Miembro del Grupo de Neurobiología de la Universidad de León

  • Berta Anuncibay Soto. Miembro del Grupo de Neurobiología de la Universidad de León

  • María Santos Galdiano. Miembro del Grupo de Neurobiología de la Universidad de León. Universidad de León.

  • Enrique Font Belmonte. Miembro del Grupo Neurobiología de la Universidad de León.. Universidad de León.

  • Irene Fernández Ugidos. Miembro del Grupo de Neurobiología de la Universidad de León. Universidad de León.

  • Paloma González Rodríguez. Miembro del Grupo de Neurobiología de la Universidad de León. Universidad de León.
Departamento / Centros Implicados

1.     Instituto de Biomedicina   Departamento de Biología Molecular de la Universidad de León.

2.     Departamento de Medicina, Cirugía y Anatomía Veterinaria de la Universidad de León.

3. Nottingham Trent University. UK



Entidades colaboradoras
  • Neural Therapies SL
Archivos adjuntos