Taller práctico de aplicaciones genómicas y metagenómicas para la detección de genes de resistencia a antibióticos en muestras ambientales y clínicas.  

Tipo
Curso de verano.
Estado
Completo.
Plazas
22
Fecha de inicio
19/06/2023
Fecha de finalización
23/06/2023
Horarios
Mañanas de 09:00 a 14:00 h.

Duración
25 horas
Destinatarios
Investigadores predoctorales y postdoctorales que estén realizando tareas de investigación en temas relacionados con el curso.

Reconocimiento de créditos
ECTS:1,2
Lugar y aulas de impartición
CRAI-TIC
Aula 110
Tasas de matrícula
  • Ordinaria:50 €
  • Alumnos ULE:40 €
  • Alumnos de otras universidades:40 €
  • Desempleados:40 €
Objetivos
  • Conocer las principales aplicaciones de las técnicas genómicas y metagenómicas para la detección de genes de resistencia a antibióticos (parte teórica breve).
  • Conocer las principales herramientas bioinformáticas disponibles para la realización de estudios de resistoma en genomas y metagenomas.


Competencias y resultados de aprendizaje

Competencias:

·         Diseñar estudios de resistoma en datos genómicos y metagenómicos

·         Utilizar las principales herramientas bioinformáticas disponibles para la realización de estudios de resistoma en datos genómicos y metagenómicos

Contenido:

·         Ejemplos de aplicaciones reales de estudios de resistoma en el ámbito de industria alimentaria y en casos clínicos

·         Introducción al uso de terminal de linux y servidores en remoto

·         Empleo de herramientas bioinformáticas

·  Comprensión de los resultados obtenidos y sus implicaciones a nivel biológico o como fuente de información para toma de decisiones



Programa
1. Introducción a la genómica, metagenómica y conceptos básicos de resistoma (José Francisco Cobo Díaz).

2. Ejemplos de aplicaciones prácticas de caracterización de resistoma en datos genómicos en el ámbito clínico, veterinario o de la cadena alimentaria (María de Toro Hernando).

3. Ejemplos de aplicaciones prácticas de caracterización de resistoma en datos metagenómicos en el ámbito clínico, veterinario o de la cadena alimentaria (Carlos Sabater Sánchez).

4. Introducción a Linux y uso de línea de comandos en terminal (Narciso Martín Quijada).

5. Ejercicio práctico de análisis de resistoma en genomas microbianos: (María de Toro Hernando).

·      Descarga de genomas ensamblados de repositorios públicos.

·      Descarga de metadatos de los genomas descargados.

·      Filtrado y ensamblaje de lecturas de secuenciación.

·      Asignación taxonómica.

·      Análisis de elementos genéticos móviles.

·      Detección de genes de resistencia a los antibióticos y mutaciones que confieran resistencia a antibióticos.

·  Localización genómica de los genes de resistencia (cromosoma, plásmido, integrón u otro tipo de elemento genético móvil).

6. Ejercicio práctico de análisis de resistoma en metagenomas: (Narciso Martín Quijada).

·       Control de calidad de secuencias para el análisis de metagenomas.

·       Ensamblaje y anotación de metagenomas.

·       Análisis de elementos genéticos móviles en metagenomas.

·     Detección de genes de resistencia a los antibióticos en metagenomas.

7. Ejemplo práctico de secuenciación en tiempo real con tecnología Nanopore: (Coral Barcenilla Canduela y Elena Fernández Trapote).

·     Explicación breve del protocolo de preparación de librerías y del proceso de secuenciación por tecnología Nanopore.

·    Carga de muestras genómicas en FlowCell conectado a una plataforma GridIon para secuenciar en tiempo real.

·        Análisis de las lecturas obtenidas: filtrado por calidad, ensamblaje, polishing y posteriores análisis genómicos.

8. Ejercicio práctico de análisis y representación de resultados usando R. (Carlos Sabater Sánchez).

·        Conceptos básicos y empleo de Machine Learning para detección de marcadores moleculares.

·     Representación de resultados: boxplot, barplot y otras visualizaciones del paquete ggplot.


Criterios de evaluación
Se exigirá la asistencia de al menos el 80% de las sesiones presenciales/online.

Se exigirá la asistencia de al menos el 80% de las sesiones presenciales, pero se aconseja asistir al 100% de las sesiones para tener un visión completa de los problemas abordados y las herramientas bioinformáticas disponibles. Evaluación continua de las tareas prácticas realizadas en el aula.



Director/es
  • José Francisco Cobo Díaz. Profesor. Facultad de Veterinaria. Universidad de León.
Profesorado/Ponentes
  • José Francisco Cobo Díaz. Profesor. Facultad de Veterinaria. Universidad de León.

  • María de Toro Hernando. Responsable de la Plataforma de Genómica y Bioinformática. Centro de Investigación Biomédica de la Rioja (CIBIR)

  • Narciso Martín Quijada. Investigador postdoctoral. Departamento de Microbiología y Genética. Instituto de Investigación en Agrobiotecnología (CIALE). Universidad de Salamanca

  • Carlos Sabater Sánchez. Investigador postdoctoral. Grupo Microhealth. Departamento de Microbiología y Bioquímica de Productos Lácteos. Instituto de Productos de Asturias (IPLA-CSIC)

  • Coral Barcenilla Canduela. Investigadora pre-doctoral. Facultad de Veterinaria. Universidad de León.

  • Elena Fernández Trapote. Investigadora pre-doctoral. Facultad de Veterinaria. Universidad de León.
Departamento / Centros Implicados
Departamento de Higiene y Tecnología de los Alimentos, Facultad de Veterinaria, Universidad de León.

Entidades colaboradoras
  • Universidad de León

  • Plataforma de Genómica y Bioinformática. Centro de investigación Biomédica de La Rioja (CIBIR)

  • Grupo Microhealth, Departamento de Microbiología y Bioquímica de Productos Lácteos (IPLA-CSIC)

  • Departamento de Microbiología y Genética,Instituto de Investigación en Agrobiotecnología (CIALE)USAL

  • Grupo Newtec, Departamento de Higiene y Tecnología de los Alimentos, Universidad de León (ULE)
Archivos adjuntos