Técnicas de Biología Celular aplicadas al sistema nervioso ("Cell Biology Techniques on the Nervous System ")

25/01/2016

Tipo

Curso de extensión universitaria.

Estado

Concluido.

Plazas

Fecha de inicio

25/01/2016

Fecha de finalización

02/02/2016

Horarios

9:00 a 14:00 am

Duración

35 horas presenciales + 40 horas de trabajo individualizado del alumno

Destinatarios

Licenciados, posgraduados o alumnos de grado de 2º, 3º y 4º de Ciencias Biológicas, Biotecnología, Veterinaria y Enfermería. Este curso se recomienda como actualización a profesores de enseñanza secundaria/bachillerato.

Reconocimiento de créditos

ECTS:3

Lugar y aulas de impartición

Facultad de Ciencias Biológicas y Ambientales
Laboratorio Fundamental. Puerta 317

Tasas de matrícula

Ordinaria:200 €
Alumnos ULE:190 €

Objetivos

1) Proporcionar los conocimientos básicos de técnicas de Biología Celular.
2) Capacitar al estudiante para la realización de técnicas básicas de Biología Celular.
3) Dar a conocer estas técnicas a estudiantes de carreras relacionadas con las ciencias de la vida y la salud, que no cuenten con una formación específica en este campo.
4) Opcional: Iniciación a la investigación

Los objetivos específicos son:
a) Explicar los aspectos básicos de funcionamiento de un laboratorio de investigación y buenas prácticas de laboratorio (BPLs). Se pretende proporcionar formación sobre los riesgos y normas de seguridad en un laboratorio y realización de un cuaderno de laboratorio.
b) Facilitar la comprensión de las bases teóricas generales de las técnicas en Biología Celular.
c) Dar a conocer las directrices básicas de cuidado y utilización de animales con fines científicos y su aplicación en dos modelos experimentales de ictus.
d) Enseñar las técnicas más comunes de fijación, obtención y preparación de muestras biológicas, con especial atención en las muestras de sistema nervioso.
e) Enseñar al estudiante algunos métodos de preparación de muestras para microscopía de fluorescencia y confocal.
f) Enseñar el proceso de adquisición de imágenes de microscopía y el procesado de las mismas.
g) (opcional). Preparar y presentar resultados de investigación.

Competencias y resultados de aprendizaje

1) Conocer el funcionamiento de un laboratorio de investigación en Biología Celular, los riesgos y las normas de seguridad básicos.
2) Conocer el objetivo y características del cuaderno de laboratorio y su importancia en el proceso de investigación.
3) Conocer las bases teóricas de las técnicas utilizadas en el curso.
4) Conocer la legislación vigente sobre el cuidado de animales de experimentación y las directrices básicas para el manejo de los mismos.
5) Utilizar en la práctica técnicas de rutina de fijación, obtención y preparación de muestras.
6) Utilizar en la práctica técnicas de histoquímica e inmunocitoquímica.
7) Observar muestras mediante el microscopio confocal y otros microscopios de fluorescencia.
8) Conocer las bases del análisis de imagen.
9) Opcional: Aprender a preparar y presentar un póster en un minisimposio. Los pósteres se realizarán en inglés y en colaboración con estudiantes de la Nottingham Trent University.

Programa

A continuación, se detalla el esquema general del curso (la siguiente relación no pretende ser un plan de las actividades que se realizarán cada día, sino el conjunto de actividades a realizar que, en muchos casos, se solaparán entre sí).
1) Manipulación de animales, necropsias, preparación de fijadores y métodos de fijación, obtención de muestras. Normas de registro anotado de datos. Buenas prácticas de laboratorio (BPLs). Riesgo y seguridad en el laboratorio. Hojas de datos de seguridad (MSDS). Duración:5 horas.
2) Obtención de secciones mediante microtomía de congelación. Técnicas histoquímicas e histoenzimáticas. Tinciones de rutina en biología celular. Modelos experimentales de ictus. Evaluación de la mortalidad celular. Duración: 10 horas.
3) Inmunocitoquímica. Parte 1. Técnica de secciones libres flotantes. Preparación e incubación con anticuerpos primarios para su detección mediante peroxidasa e inmunofluorescencia: Marcado con el anticuerpo primario. Duración: 6 horas.
4) Inmunocitoquímica. Parte 2. Técnica de secciones libres flotantes. Preparación e incubación con anticuerpos primarios para su detección mediante peroxidasa e inmunofluorescencia: El marcado con el anticuerpo secundario y su detección. Duración: 6 horas.
5) Observación en microscopía de campo claro, confocal y otros microscopios de fluorescencia. Captura de imágenes. Duración: 5 horas.
6) Análisis mediante “ImageJ”. Cuantificación estereológica y densitométrica. Duración: 3 horas.
7) Análisis de los datos obtenidos y evaluación de los conocimientos . Actividades no presenciales.
8) Presentación de un poster en el minisimposio online "Astrogliosis and stroke". Actividad opcional que permite el reconocimiento del curso por la NTU. Duración: 5 horas (+ preparación de póster en horas no presenciales).
Programme
1) Animal handling, necropsies, sampling, preparing and fixing tissues. Recording data. Good laboratory practice (GLP). Recording observations. Risk and safety in the laboratory. Material safety data sheets (MSDS). 5 hours.
2) Obtaining sections with freezing microtomes. Histochemical and histoenzymatic techniques. Routinely staining in Cell Biology. Experimental stroke models. Cell mortality measuring. 10 hours
3) Immunocytochemistry. Part 1. Free floating sections immunocytochemistry. Peroxidase and immunofluorescence methods: The labeling with the primary antibody. 6 hours
4) Immunocytochemistry. Part 2. Free floating sections immunocytochemistry. Peroxidase and immunofluorescence methods: Labeling and detection with the secondary antibody. 6 hours
5) Observation in light, confocal and other fluorescence microscopes. Image capture. 5 hours
6) Analysis image with ImageJ. Stereologic and densitometric quantification. 3 hours.
7) Data analysis and evaluation. No attendant activities.
8) Optional: Presenting a poster in the minisymposium "Astrogliosis and stroke". This activity is optional and is required for the acknowledgment of the course by the NTU. 5 hours.

Criterios de evaluación

Se exigirá la asistencia de al menos el 80% de las sesiones presenciales/online.
Los alumnos realizaran pruebas de tipo test en la plataforma Moodle (20-50 preguntas) sobre cada una de las competencias especificadas en los objetivos. Tiene que obtenerse un mínimo de 75% de preguntas correctas en cada test para superar el curso. Las presentaciones del minisimposio incluirán aspectos teóricos y prácticos del curso y serán evaluados por profesorado de la Universidad de León y Nottigham Trent University y sus certificados serán reconocidos por ambas universidades. Los alumnos que no participen in the minisimposio solo recibirán reconocimiento del curso por la Universidad de León.

Director/es

Arsenio Fernández López. Catedrático de Biología Celular. Director del Grupo de Neurobiología de la ULE. Universidad de León.

Profesorado/Ponentes

Carlos César Pérez García. Profesor . Facultad de Veterinaria. Universidad de León.

Diego Pérez Rodríguez. Miembro del Grupo de Neurobiología de la Universidad de León

Berta Anuncibay Soto. Miembro del Grupo de Neurobiología de la Universidad de León

María Santos Galdiano. Miembro del Grupo de Neurobiología de la Universidad de León. Universidad de León.

Enrique Font Belmonte. Miembro del Grupo Neurobiología de la Universidad de León.. Universidad de León.

Irene Fernández Ugidos. Miembro del Grupo de Neurobiología de la Universidad de León. Universidad de León.

Paloma González Rodríguez. Miembro del Grupo de Neurobiología de la Universidad de León. Universidad de León.

Christian Thode . Senior Lecturer in Pharmacology.. Nottingham Trent University. UK

Arsenio Fernández López. Catedrático de Biología Celular. Director del Grupo de Neurobiología de la ULE. Universidad de León.

Departamento / Centros Implicados

1. Instituto de Biomedicina. Departamento de Biología Molecular de la Universidad de León.
2. Departamento de Medicina, Cirugía y Anatomía Veterinaria de la Universidad de León.

Entidades colaboradoras